Abstract
Un batterio Gram-negativo, ceppo AL98, è stato isolato da un fallo di acqua all’interno di un deterioramento del pneumatico della macchina sul campo di un contadino a Münster, in Germania., Il ceppo è stato in grado di disintegrare considerevolmente la gomma naturale (NR), sia allo stato grezzo come concentrato di lattice NR o allo stato vulcanizzato come guanto di lattice NR, così come sintetico grezzo cis-1,4-poliisoprene (IR). La determinazione dell’evoluzione dell’anidride carbonica e del numero di cellule viventi durante la coltivazione in lotti con ciascuno dei materiali come unica fonte di carbonio, ha rivelato la mineralizzazione del polimero di gomma durante l’aumento della biomassa., L’indagine superficiale mediante microscopia elettronica a scansione ha dimostrato un comportamento di crescita adesiva del ceppo che procede colonizzando la superficie della gomma, fondendosi nella gomma e formando un biofilm prima della disintegrazione del materiale. La colorazione del reagente di Schiff eseguita con guanti in lattice NR indicava la produzione e l’accumulo di gruppi aldeidici durante la colonizzazione. Il substrato solido del guanto è scomparso completamente dopo un periodo di coltivazione prolungato a causa della continua degradazione., Le analisi tassonomiche del ceppo, che erano anche basate sull’esame di somiglianza del gene rRNA 16S completo, hanno rivelato la classificazione del ceppo AL98 come ceppo di Pseudomonas aeruginosa. Questo è il primo rapporto sull’isolamento di un batterio Gram-negativo che mostra forti proprietà di decomposizione della gomma.
1 Introduzione
La gomma naturale grezza (NR) per applicazioni tecniche è ottenuta come lattice dall’albero della gomma Hevea brasiliensis. Più del 90% del peso secco del lattice è costituito da cis-1,4-poliisoprene (IR) (Mw >106 Da)., Prima della conversione in prodotti in gomma subisce ulteriori lavorazioni, come la concentrazione, la masticazione e la vulcanizzazione, cioè la reticolazione delle catene polimeriche. IR può anche essere sintetizzato chimicamente migliorando così, ma non sostituendo, tutte le proprietà del prodotto naturale. Entrambi i tipi di gomme poliisoprene sono noti per essere suscettibili all’azione microbica . La maggior parte dei batteri degradanti NR sono stati identificati come membri del gruppo di actinomiceti . C’è solo un rapporto sul trattamento del lattice NR con l’estratto grezzo extracellulare di un batterio Gram-negativo, un Xanthomonas sp.,, conducendo alla formazione di oligomeri con Mw fra 103 e 104 Da . Tuttavia, la capacità di questo ceppo di colonizzare e decomporre la gomma solida era piuttosto scarsa .
In questa comunicazione, viene riportato l’isolamento del ceppo degradante della gomma AL98, che è stato identificato come rappresentante della specie Pseudomonas aeruginosa, indicando che non solo gli actinomiceti sono potenti degradatori di NR e IR., Poiché i membri di questa specie Gram-negativa sono fisiologicamente e geneticamente ben caratterizzati, questo ceppo può offrire vantaggi per la delucidazione delle cause fisiologiche e genetiche della degradazione della gomma.
2 Materiali e metodi
2.1 Gomme
NR latex concentrate (Neotex Latz) è stato ottenuto da Weber e Schaer (Amburgo, Germania) e IR (SKI3) da Continental AG (Hannover, Germania). I guanti in lattice NR (rotiprotect™) sono stati acquistati da Roth (Karlsruhe, Germania).
2.,2 Colture
Le colture liquide sono state effettuate in flaconi di Erlenmeyer da 300 ml contenenti un mezzo di sali minerali (MSM), come descritto in precedenza . NR latex concentrate è stato aggiunto allo 0,8% (v/v) a 30 ml MSM, che corrisponde allo 0,5% di sostanza secca (w/v) considerando le specifiche del fornitore. I guanti in lattice NR sono stati tagliati in piccoli pezzi da 0,15 g e ciascuno è stato aggiunto senza ulteriore trattamento a 30 ml MSM. L’IR è stato tagliato in piccoli pezzi di circa 2-3 mm di diametro, estratto con acetone (1-2 giorni) e 0,15 g sono stati aggiunti a 30 ml MSM., La sterilizzazione a caldo prima dell’inoculazione è stata effettuata in autoclave.
Per la microscopia elettronica a scansione (SEM), le colture IR sono state preparate come segue: 3 g di gomma IR estratta dall’acetone sono stati sciolti in 100 ml di cloroformio per dare una soluzione IR al 3%. Sottili pezzi rettangolari di alluminio con una superficie di circa 1 cm2 sono stati immersi in questa soluzione e asciugati in un flusso d’aria. Questa procedura è stata ripetuta fino a quando entrambi i lati dei pezzi di alluminio sono stati rivestiti completamente con materiale IR., I pezzi rivestiti sono stati sterilizzati con etanolo al 96% e aggiunti a 30 ml di soluzione MSM già autoclavata in flaconi da 300 ml. Le cellule sono state precoltivate durante la notte a 30 ° C in un mezzo complesso Luria-Bertani (LB) da 10 ml, lavate due volte con soluzione salina, risospese in 1 ml di soluzione salina e 10 µl sono state inoculate nelle colture contenenti gomma. I flaconi inoculati sono stati incubati a 30°C e agitati a 180 giri / min.
Le colture solide sono state eseguite in piastre di Petri contenenti agar LB o agar latex MSM., In tal modo sono stati utilizzati due tipi di piastre di agar in lattice: (1) piastre di film di lattice, preparate spargendo il concentrato di lattice come un film sottile direttamente sull’agar MSM, e (2) piastre di sovrapposizione di lattice, preparate versando un sottile strato di agar MSM contenente concentrato di lattice NR disperso ad una concentrazione dello 0,02% (w/v) sopra l’agar MSM L’incubazione delle piastre inoculate è stata effettuata a 30°C.,
Il modello di utilizzo del substrato è stato effettuato utilizzando il sistema di identificazione batterica BBL Oxi / Ferm Tube II (Becton Dickinson, Cockeysville, MD, USA) come specificato dai produttori.
2.3 Mineralizzazione
La misurazione della mineralizzazione è stata eseguita in flaconi ermetici di Erlenmeyer da 500 ml determinando il rilascio di CO2 dopo diversi periodi di coltivazione, come descritto di recente . La quantità di substrato di gomma fornita comprendeva in tutti i casi 0,25 g in 50 ml MSM.
2.,4 Colorazione con reagente Schiff
Recentemente è stata mostrata la colorazione dei guanti in lattice NR con reagente Schiff . La procedura analoga applicata qui era la seguente: in una bottiglia ben chiusa, 10 ml del reagente fuchsin sono stati aggiunti a un campione e il colore viola è stato sviluppato per 10-30 min a temperatura ambiente. La quantità in eccesso del reagente è stata quindi scartata e sono stati aggiunti 10 ml della soluzione di solfito per sopprimere la reazione di colore non specifica del campione bianco., La composizione della fucsina reagente è stato il seguente: 2 g fucsina sciolto in 50 ml di acido acetico glaciale plus 10 g Na2S2O5 plus 100 ml di una soluzione 0,1 N HCl plus 50 ml di H2O. La composizione della soluzione di solfito è stato: 5 g Na2S2O5 plus 5 ml di HCl concentrato (37-38%), ad 100 ml con H2O.
2.5 microscopia elettronica a Scansione
NR-guanti in lattice e IR-rivestito di alluminio sottili pezzi sono stati presi dal liquido di culture diverse coltivazione periodi, fissa con il 2,5% di glutaraldeide in 0.1 M tampone fosfato (PBS; pH 7.3) secondo Sørensen ., Dopo il lavaggio con PBS, le colture sono state postfissate in tetrossido di osmio 1% in PBS 0.1 M (pH 7.3) e disidratate in etanolo classificato(30%, 50%, 70%, 90%, 96% e etanolo assoluto). I campioni disidratati sono stati sottoposti al punto critico di essiccazione con CO2 liquida secondo la procedura standard. Successivamente, i campioni sono stati montati su campioni di alluminio utilizzando carbonio conduttore elettricamente (PLANO, Wetzlar, Germania) e sputter-rivestito con circa 15 nm oro utilizzando gas argon come plasma ionizzante. L’imaging è stato eseguito con un microscopio elettronico a scansione S-450 (SEM; Hitachi Ltd.,, Giappone) con elettroni secondari a tensione di accelerazione 20 kV e a temperatura ambiente. Le micrografie sono state registrate da un tubo catodico ad alta risoluzione utilizzando film negativo (Agfapan, APX 100).
2.6 L’analisi di 16S rDNA
L’estrazione del DNA genomico è stata effettuata come descritto in precedenza . L’amplificazione del gene rRNA 16S è stata eseguita utilizzando oligonucleotidi come primer come descritto in . Le sequenze nucleotidiche del prodotto PCR purificato sono state determinate con un sequenziatore di DNA 4000L (LI-COR Inc.,, Biotechnology Division, Londra, NE, USA) e un kit per il ciclo di sequenziamento del primer etichettato con fluorescenza termo sequenasi (Amersham Life Science, Little Chalfont, UK) come specificato dai produttori che impiegano i primer descritti in . Le sequenze rDNA 16S sono state allineate manualmente con sequenze pubblicate da rappresentanti di pseudomonadi ottenuti da EMBL.
3 Risultati
3.,1 Isolamento del ceppo AL98
Sono stati raccolti campioni ambientali da acqua sporca all’interno di pneumatici auto deteriorati in un campo agricolo a Münster, in Germania, e successivamente sottoposti a screening per la presenza di batteri degradanti della gomma. L’isolamento di due nuovi actinomiceti appartenenti al genere Gordonia (ex Gordona) dopo l’arricchimento su materiale granulare del pneumatico è stato precedentemente riportato ., Uno dei campioni è stato arricchito con NR latex concentrate in coltura liquida che ha mostrato un sostanziale aumento della torbidità e una notevole disintegrazione del materiale solido in lattice che è stato inizialmente coagulato completamente in un ciuffo nelle condizioni di coltivazione scelte (agitazione a 180 rpm in MSM). Questa coltura di arricchimento è stata successivamente testata per la crescita su lastre di film di lattice. L’incubazione notturna ha rivelato aree verdastre sul film di lattice., Un ulteriore arricchimento da tali aree su piastre LB ha rivelato singole colonie di un isolato batterico, designato come ceppo AL98, che ha formato colonie verdastre su piastre LB dopo 1 giorno e ha anche portato a una colorazione verdastra scura dell’agar LB dopo 2 giorni. La crescita sulle piastre del film del lattice si è presentata come biofilm senza formazione classica della colonia che causa la colorazione verdastra di entrambi, del materiale del lattice che era nel contatto diretto alle cellule ed anche dell’agar di MSM., Questo colore verdastro è diventato un debole colore rossastro durante l’incubazione prolungata (>1 settimana); questo è stato accompagnato da una compensazione del film di lattice nell’area del biofilm. Non è stato possibile determinare la crescita del ceppo su piastre di sovrapposizione in lattice.
3.2 Classificazione tassonomica
Il ceppo AL98 era un batterio a forma di bastoncello mobile, Gram-negativo, ossidasi-positivo e catalasi-positivo (0,5 µm da 2 a 3 µm). A causa di queste caratteristiche, è stata eseguita l’analisi di identificazione da parte del sistema BBL Oxi/Ferm Tube II., Successivamente, il modello di utilizzo del substrato ha rivelato i seguenti risultati: crescita su arginina, N2, xilosio, glucosio (aerobico), urea e citrato; nessuna crescita su glucosio (anaerobico), lattosio, saccarosio, indolo, maltosio, mannitolo e fenilalanina; reazione indistinta per lisina. Il codice numerico ottenuto ha portato a una classificazione a P. aeruginosa, indipendentemente dal risultato della reazione di lisina.
Ulteriore caratterizzazione tassonomica del ceppo AL98 è stata effettuata mediante analisi del gene 16S rRNA. Il gene quasi completo è stato sequenziato composto da 1530 nucleotidi., Secondo i risultati della ricerca sulla base di dati EMBL, la sequenza ha rivelato le più alte somiglianze che vanno dal 99,9% al 100% a diversi ceppi di P. aeruginosa elencati. Le somiglianze più alte successive erano 98.7% a Pseudomonas resinovorans e 97.7% a Pseudomonas alcaligenes. Secondo Moore et al. I ceppi di P. aeruginosa possiedono una regione di 32 bp nel loro 16S rDNA, corrispondente alle posizioni di E. coli 66-103, che è ipervariabile tra diverse specie del genere Pseudomonas, ma 100% conservato tra i ceppi di P. aeruginosa. Esattamente la stessa sequenza, che è tipica di P., aeruginosa, è stato anche determinato per ceppo AL98 nelle posizioni 58-89. I dati della sequenza genica 16S rRNA sono stati presentati alla base di dati della sequenza nucleotidica EMBL e sono elencati sotto il numero di adesione. AJ249451. Il ceppo AL98 è stato depositato nella collezione di cultura dell’Institut für Mikrobiologie, Münster, Germania, come P. aeruginosa AL98.
3.3 Disintegrazione della gomma naturale
Colture pure di P. aeruginosa AL98 sono state ottenute da piastre LB dopo diversi passaggi su questo mezzo e testate per la crescita su NR latex concentrate., La disintegrazione visibile della gomma coagulata è iniziata solo dopo 2-3 settimane di incubazione. Al contrario, quando le cellule AL98 delle colture di lattice sono state utilizzate come inoculo, la disintegrazione del materiale è già iniziata dopo 2 giorni. Se queste “celle adattate” sono state successivamente sottoposte a diversi passaggi su piastre LB, è stato nuovamente osservato un inizio ritardato del processo di disintegrazione della gomma. È stato generalmente osservato che la crescita è stata ancora più ritardata più passaggi sul mezzo LB sono stati eseguiti. L’osservazione simultanea mediante microscopia ottica ha rivelato in ogni caso solo un tipo di aste mobili., Tuttavia, le cellule lavate da colture adattate tendevano generalmente ad assorbire sulle pareti delle tazze o dei tubi di vetro di Eppendorf utilizzati per il lavaggio in contrasto con le cellule provenienti da colture LB, che erano microscopicamente identiche alle cellule provenienti da colture di lattice, ma non mostravano alcuna proprietà adesiva. I test di crescita eseguiti con diversi altri ceppi di P. aeruginosa provenienti da diverse collezioni di colture, come PAO1, DSM 50071, DSM 939 e ATCC 27853, non hanno rivelato alcuna crescita sulla gomma naturale e hanno mostrato anche una diminuzione del numero di cellule viventi durante l’incubazione su supporti contenenti gomma (dati non mostrati).
3.,4 la Crescita del cis-1,4-poliisoprene
Diversi PI che contengono materiali che sono stati utilizzati come fonti di carbonio suola di determinare la capacità e il grado di crescita di P. aeruginosa AL98 su gomme: NR-lattice concentrato, che contiene >90% del peso a secco di PI, NR guanti di lattice, che corrispondono a vulcanizzata NR, cioè con legami crociati tra le catene polimeriche, nonché di materie sintetiche IR. In tutti i casi la crescita è stata determinata con cellule adattate. Fico. 1A si riferisce al corso temporale della mineralizzazione dei substrati di gomma., Per la valutazione del rilascio di CO2, si è ipotizzato che le gomme impiegate consistessero totalmente in carbonio. Dopo 6 settimane, la migliore mineralizzazione è stata rilevata con NR latex concentrate (36%), seguita da NR latex gloves (26%) e IR (21%). Inoltre, sono stati rilevati anche aumenti della biomassa delle stesse colture per tutti e tre i substrati come mostrato in Fig. 1B che mostra il corso del tempo del conteggio delle cellule viventi durante l’incubazione su questi substrati., Nonostante il comportamento di crescita preferenzialmente adesivo, si è verificato un aumento del numero di cellule sospese nel mezzo durante la coltivazione con NR latex concentrate (35 volte), NR latex glove (11 volte) e IR (sette volte).
Coltivazione di P. aeruginosa AL98 sulle gomme contenenti IR NR latex concentrate (●), NR latex glove (○) e IR (▾). A: Andamento temporale della mineralizzazione espresso in % di CO2 rilasciata dal carbonio totale. B: Aumento del numero di cellule vive sospese durante la coltivazione. I valori sono mezzi di misure triple.,
Coltivazione di P. aeruginosa AL98 sulle gomme contenenti IR NR latex concentrate (●), NR latex glove (○) e IR (▾). A: Andamento temporale della mineralizzazione espresso in % di CO2 rilasciata dal carbonio totale. B: Aumento del numero di cellule vive sospese durante la coltivazione. I valori sono mezzi di misure triple.
3.5 SEM e altre analisi delle superfici in gomma
Il comportamento di colonizzazione e la formazione di biofilm di P. aeruginosa AL98 sul materiale dei guanti in lattice NR sono stati studiati da SEM (Fig. 2)., Rispetto ad un controllo non inoculato (Fig. 2A), la superficie di gomma è stata completamente coperta da un biofilm dopo un periodo di coltivazione di 6 settimane (Fig. 2 TER). Fico. 2C mostra le cellule che si fondono nel materiale di gomma, che si è verificato dopo 2 settimane, mentre dopo 6 settimane di incubazione ulteriore disintegrazione del materiale è diventato visibile (Fig. 2D).
Micrografie di elettroni secondari che mostrano la crescita di P. aeruginosa AL98 sui guanti in lattice NR. A: Controllo non inoculato che mostra la superficie di gomma. B: Biofilm formato alla superficie di gomma dopo 6 settimane. C: Dettagli dalla crescita dopo 2 settimane., D: Dettagli dalla crescita dopo 6 settimane. Le barre corrispondono a 5 µm.
Micrografie elettroniche secondarie che mostrano la crescita di P. aeruginosa AL98 sui guanti in lattice NR. A: Controllo non inoculato che mostra la superficie di gomma. B: Biofilm formato alla superficie di gomma dopo 6 settimane. C: Dettagli dalla crescita dopo 2 settimane. D: Dettagli dalla crescita dopo 6 settimane. Le barre corrispondono a 5 µm.
La formazione di biofilm è stata dimostrata anche dopo 6 settimane colorando i guanti in lattice troppo cresciuti con il reagente Schiff., Il colore viola prodotto dal reagente ha fornito la prova che i prodotti di degradazione contenenti gruppi aldeidici sono stati prodotti e accumulati durante la degradazione microbica, come è stato recentemente riportato da Tsuchii .
La completa disintegrazione del materiale dei guanti è stata osservata anche dopo periodi di coltivazione prolungati di oltre 3 mesi., I primi esperimenti per ottimizzare questo processo di disintegrazione hanno portato a una degradazione molto accelerata dei guanti, quando MSM è stato sostituito di volta in volta da MSM fresco durante la coltivazione in lotti liquidi, indicando che la coltura semi-continua è una possibile strategia per aumentare il tasso di degradazione, come precedentemente scoperto per un ceppo Nocardia degradante in gomma .
La crescita di P. aeruginosa AL98 su IR è mostrata nei micrografi SEM di Fig. 3. La formazione di biofilm era già visibile dopo 1 settimana di coltivazione. Fico. 3B dimostra AL98 aste colonizzare la superficie di gomma, e Fig., 3C mostra le cellule che si fondono nella gomma e i forti contatti tra le cellule per mezzo di pilli. Infine, Fig. 3D illustra una regione del biofilm formata dopo 4 settimane sulla superficie IR.
Micrografie di elettroni secondari che mostrano la crescita di P. aeruginosa AL98 su IR sintetico. A: Controllo non inoculato che mostra la superficie di gomma. B: Colonizzazione della superficie di gomma dopo 1 settimana. C: Dettagli dalla colonizzazione dopo 1 settimana. D: Biofilm formato sulla superficie di gomma dopo 4 settimane. Le barre corrispondono rispettivamente a 50 µm (D), 5 µm (A,B) e 0,5 µm (C).,
Micrografie di elettroni secondari che mostrano la crescita di P. aeruginosa AL98 su IR sintetico. A: Controllo non inoculato che mostra la superficie di gomma. B: Colonizzazione della superficie di gomma dopo 1 settimana. C: Dettagli dalla colonizzazione dopo 1 settimana. D: Biofilm formato sulla superficie di gomma dopo 4 settimane. Le barre corrispondono rispettivamente a 50 µm (D), 5 µm (A,B) e 0,5 µm (C).,
4 Discussione
Le procedure di screening per l’isolamento dei batteri degradanti della gomma hanno portato alla coltura pura del batterio Gram-negativo AL98 con una maggiore capacità di disintegrare la gomma naturale grezza e vulcanizzata e l’IR sintetico. Studi tassonomici tra cui l’analisi 16S rRNA hanno rivelato questo batterio come membro della specie P. aeruginosa. Questi risultati forniscono la prova che accanto agli actinomiceti anche i batteri Gram-negativi sono potenti degradatori di NR e IR. Classificazione tassonomica del ceppo AL98 a P., aeruginosa, che è una delle specie batteriche meglio studiate, offre vantaggi rispetto a chiarire le basi fisiologiche e genetiche della degradazione della gomma, poiché i batteri degradanti della gomma appartenenti al gruppo degli actinomiceti non sono quasi accessibili ai metodi genetici.
P. aeruginosa AL98 ha mostrato una crescita adesiva verso gomme solide in modo analogo a quello mostrato di recente per alcuni actinomiceti ., Simile a questi batteri, il ceppo AL98 ha espresso forti proprietà di decomposizione della gomma e non ha prodotto zone di compensazione (aloni traslucidi) su piastre di sovrapposizione di lattice come altri decompositori di gomma più deboli isolati in precedenza .
La diminuzione osservata della proprietà degradante della gomma dopo il successivo trasferimento sul mezzo nutritivo LB rivela che questa capacità di P. aeruginosa AL98 non è stabile. D’altra parte, l’attività degradante della gomma potrebbe essere ripristinata dopo un lungo adattamento sul substrato di gomma. La ragione di ciò è ancora sconosciuta e deve essere esaminata in dettaglio., È possibile che AL98 porti plasmidi che codificano le informazioni genetiche per la degradazione della gomma, che viene persa dopo successive coltivazioni su terreni complessi. Tuttavia, le prime prove per isolare i plasmidi di degradazione putativa da colture di AL98 adattate con il metodo di lisi alcalina secondo non hanno dato alcuna indicazione per questo. D’altra parte, gli studi SEM sulla colonizzazione IR hanno rivelato che c’era un forte contatto tra le cellule di pili(Fig. 3C), in modo che anche un trasferimento di informazioni genetiche da una cellula all’altra potrebbe teoricamente verificarsi.,
La colorazione con il reagente di Schiff ha rivelato che i gruppi aldeidici si sono formati sulla superficie della gomma durante la degradazione. Questo risultato corrisponde bene ai risultati ottenuti da un analogo esame di un ceppo Nocardia precedentemente descritto . Studi precedenti con questo isolato hanno mostrato che oligomeri contenenti gruppi carbonilici alle loro estremità si sono formati durante la degradazione indicando la scissione ossidativa della catena IR ai doppi legami . Un ulteriore esame deve chiarire se questo schema è adatto anche per P. aeruginosa AL98., Durante studi preliminari, in cui è stata testata la crescita di cellule AL98 adattate su carbone di basso rango come unica fonte di carbonio costituita da strutture simili alla lignina, è stato osservato un aumento di quasi otto volte del numero di cellule viventi di cellule sospese dopo un periodo di coltivazione di 10 settimane (dati non mostrati). La produzione di biomassa da questo substrato implica anche la degradazione ossidativa del polimero simile alla lignina.
Ringraziamenti
Vorremmo ringraziare il signor Mahmoud M. Berekaa per il suo aiuto durante la preparazione di IR-substrato per SEM., Fornitura della descrizione del metodo per la colorazione con il reagente di Schiff dal Dr. Akio Tsuchii dell’Istituto Nazionale di Bioscienze e tecnologia umana, Higashi, Tsukuba, Ibaraki, Giappone, è riconoscente. Inoltre, gli autori apprezzano l’esperto lavoro fotografico della signora G. Kiefermann dell’Institut für Medizinische Physik und Biophysik.